FiZİko-kimyasal özelliklerin belirlenmesinde kullanilan yöntemler



Yüklə 5,29 Mb.
səhifə46/81
tarix26.08.2018
ölçüsü5,29 Mb.
#74879
1   ...   42   43   44   45   46   47   48   49   ...   81

Ek- I

Yeniden oluşturulmuş su

Uygun seyreltme suyu örneği
Bütün kimyasallar analitik saflıkta olmalı.
Su iyi-kalitede damıtılmış su veya iletkenliği 5 µScm-1’den azolan iyonlardan arındırılmış su olmalı.
Suyun destilasyonu için kullanılan düzenekler bakırdan yapılmış kısımlar içermemelidir.
Stok çözeltiler
CaCI2. 2H2O (kalsiyum klorür dihidrat): 11,76 g

Su içerisinde çöz ve 1 litreye seyrelt.

MgSO4. 7H2O (mağnezyum sülfat heptahidrat): 4,93 g

Su içerisinde çöz ve 1 litreye seyrelt.

NaHCO3(sodyum hidrojen karbonat): 2,59 g

Su içerisinde çöz ve 1 litreye seyrelt.

KCI (potasyum klorür): 0,23 g

Su içerisinde çöz ve 1 litreye seyrelt.


Yeniden oluşturulmuş seyreltme suyu
Dört stok çözeltisinden 25 ml alarak karıştır 1 litreye su ile tamamla.
Çözünmüş oksijen konsantrasyoni hava-doygunluk değerine eşit oluncaya kadar havalandır.

pH 7,8 ± 0,2 olmalıdır.


Eğer gerekliyse pH’ ı NaOH (sodyum hidroksit) ve HCl (hidroklorik asit) kullanarak ayarla.
Daha önce hazırlanmış olan seyreltme suyu 12 saattir bekliyorsa daha fazla havalandırılmamalıdır.
Çözeltideki Ca ve Mg iyonlarının toplamı litrede 2,5 mmol. Ca:Mg iyonlarının oranı 4:1 ve Na:K iyonlarının oranı 10:1’dir. Bu çözeltinin toplam bazlığı litrede 0,8 mmol dür.
Seyreltme suyunun hazırlanmasındaki herhangi bir sapma suyun bileşimini ve özelliklerini değiştirmemelidir.
Ek-II

Gerekli türler

Gerekli test sıcaklığı aralığı (°C)

Test hayvanın gerekli toplam uzunluğu (cm)

Brachydaniorerio(Teleostei,

Cyprinidae)(Hamilton-Buchanan)

Zebra Balığı-Zebrab-fish



20-24

3,0 ± 0,5


Pimephalespromelas(Teleostei,

Cyprinidae)(Rafinesque) Fathead

Minnow


20-24

5,0 ± 2,5


Cyprinuscarpio(Teleostei,

Cyprinidae) (Linneaus 1758)

Sazan-Commoncarp




20-24

6,0 ± 2,0

Oryziaslatipes(Teleostei,

Poeciliidae) Cyprinodontidae

(Tomminck and Schlege 1850)

Redkillifish


20-24

3,0 ± 1,0

Poeciliareticulata(Teleostei,

Poeciliidae) (Peters 1859) Guppy


20-24

3,0 ± 1,0

Lepomismacrochirus(Teleostei,

Centrarchidae)(Rafinesque

Linneaus 1758) Bluegill



20-24

5,0 ± 2,0


Onchorhynchusmykiss(Teleostei,

Salmonidae)(Walbaum 1988)

Gökkuşağı alabalığı-Rainbowtrout



12-17


6,0 ± 2,0



Leuciscusidus(Teleostei,

Cyprinidae)(Linneaus 1758) Golden

Orfe


20-24


6,0 ± 2,0

Toplama


Yukarıda listelenen balıklar beslemesi kolay ve tüm bir yıl boyunca geniş oranda bulunabilen balıklardır. Yavrulamaya, hastalık altında ve kontrollu parazit koşullarında balık çiftliklerinde ve laboratuvarlarda yetiştirilmeye eğilimlidirler, bu sebeple nesli bilinen test hayvanları sağlıklı olacaklardır. Bu balıklar dünyanın birçok bölgesinde bulunabilirler.


Ek-III

Konsantrasyon: ölüm yüzdesi örneği

Log olasılık kağıdı kullanarak LC50nin elde edilmesi örneği





C.2 DAPHNIA SP. AKUT HAREKETSİZLEŞTİRME TESTİ



  1. YÖNTEM

Bu akut hareketsizleştirme test yöntemi, OECD TG 202’ye (2004) eşdeğerdir.




    1. Giriş

Bu yöntem su pirelerinde (daphnia sp.) kimyasalların etkilerini değerlendirmek için akut toksisite testini tanımlar. Mümkün olduğunca mevcut yöntemlerden de faydalanılmıştır (1)(2)(3).




    1. Tanımlar

Bu yöntem kapsamında aşağıdaki tanımlar kullanılır:


EC50: Belirlenen maruz kalma süresinde su pirelerinin % 50’sinin hareketsizleşeceği tahmini konsantrasyondur. Başka bir tanım kullanılırsa referans bilgisiyle birlikte raporlanmalıdır.
Hareketsizleştirme: Test tüpünün hafifçe çalkalanmasından sonra 15 dakika içerisinde yüzemeyen hayvanlar, antenlerini hareket ettirebilseler bile, hareketsizleştirilmiş sayılır.


    1. Test yöntemi ilkeleri

Testin başında 24 saatlikten küçük olan genç su pireleri bir konsantrasyon aralığında 48 saatlik bir sürede test maddesine maruz bırakılır. Hareketsizleştirme 24. ve 48. saatte kayıt edilir ve kontrol değerleriyle karşılaştırılır. Sonuçlar 48 saatlik EC50 değerini hesaplamak için analiz edilir (bkz. Bölüm 1.2 Tanımlar). 24 saatlik EC50 değerinin hesaplanması tercihe bağlıdır.




    1. Test maddesi hakkında bilgi

Test maddesinin suda çözünürlüğü ve buhar basıncı bilinmeli, raporlanmış geri kazanım yeterliliğiyle birlikte, maddenin test çözeltisi içindeki miktarın belirleneceği güvenilir bir analitik yöntem ve saptama sınırları mevcut olmalıdır. Yapısal formül, maddenin saflığı, suda veya ışıkta kararlılığı, Pow ve kolay biyobozunurluk testinin sonuçlarının bilinmesi faydalıdır (bkz. Yöntem C.4)


Not: test yapılmasını zorlaştıran fizikokimyasal özellikleri olan maddeler için rehber (4)’de verilmiştir.


    1. Referans maddeler

Referans maddesi test koşullarının güvenilir olup olmadığının kontrolü için EC50’nin ölçümünde test edilebilir. Uluslararası halka-testlerinde kullanılan toksik maddeler (1)(5) bu amaç için tavsiye edilir1. Referans maddesiyle yapılan testler yılda en az iki defa ve tercihen her ay yapılmalıdır.




    1. Kalite kriterleri

Testin geçerli olması için aşağıdaki performans kriteleri uygulanmalıdır:



  • Çözücü ajanları içeren kontrollerde dahil olmak üzere kontrollerde su pirelerinin % 10’undan fazlası hareketsizleştirilmemelidir.

  • Testin sonunda kontrol ve test tüpündeki çözünmüş oksijen konsantrasyonu en az ≥ 3 mg/l olmalıdır.

Not: İlk kriter için kontrol su pirelerinin % 10’undan fazlası hareketsizleşme veya diğer hastalık yada stres işareti, örneğin renksizleşme, su yüzeyinde tutulu kalma gibi olağandışı davranış göstermemelidir.




    1. Test yönteminin tanımı




      1. Düzenek

Test çözeltisiyle temas edecek test tüpleri ve diğer düzenek ekipmanları camdan veya kimyasal tepkimeye girmeyecek başka bir malzemeden yapılmış olmalıdır. Test tüpleri veya beherleri genelde cam olur ve her kullanımdan önce standart laboratuvar usullerine göre temizlenir. Test tüpleri buharlaşmadan dolayı su kaybını engellemek için gevşekçe kaplanmalı ve çözeltinin içine toz girmesi engellenmelidir. Uçucu maddeler tamamen doldurulmuş ve kısıtlayıcı veya çok düşük oksijen girişini engellemeye yetecek kadar büyük kapalı tüplerde test edilmelidir (bkz. Bölüm 1.6 ve Bölüm 1.8.3’ün ilk paragrafı).


Ek olarak aşağıdaki ekipmandan bazıları yada tümü kullanılır: oksijen-metre (mikroelektrodlu veya düşük hacimli numunelerde çözünmüş oksijeni ölçmek için uygun diğer ekipman), pH-metre, sıcaklık kontrolü için yeterli araç, toplam organik karbon konsantrasyonunu (TOC) ölçen araç, kimyasal oksijen ihtiyacı (KOİ) ölçen araç, sertlik ölçen araç.


      1. Test organizması


Daphnia pulex gibi diğer uygun su piresi türleri de kullanılabiliyor olsa da, Daphnia magna Straus bu test için tercih edilen türdür. Testin başında, hayvanlar 24 saatlikten daha küçük olmalı ve değişkenliği azaltmak için ilk kuşaktan olmamalıdır. Hayvanlar sağlıklı bir stoktan alınır (yüksek ölüm oranı, erkek veya kış yumurtalarının (ephippia) varlığı, ilk neslin üretiminde gecikme, renksizleşmiş hayvanlar gibi herhangi bir stres işareti göstermemelidir). Testlerde kullanılan bütün organizmalar aynı su piresi stokundan oluşturulan kültürlerden alınır. Stok hayvanları test hayvanları ile aynı kültür koşullarında (ışık, sıcaklık, ortam) korunur. Eğer test için kullanılan su piresi kültür ortamı rutin su piresi kültüründen farklı ise test öncesi ortama alıştırma süresi uygulanması iyi olur. Bunun için yavru su pireleri teste başlamadan 48 saat önce test sıcaklığındaki seyreltme suyunda korunur.

      1. Bekleme ve seyreltme suyu

Eğer su pireleri kültür, uyum ve test süresince stres işareti göstermeden hayatta kalabiliyorlarsa doğal su (yüzey ya da yeraltı suyu), yeniden oluşturulmuş su veya kloru alınmış musluk suyu bekleme veya seyreltme suyu olarak kullanılabilir. Kimyasal özellikleri Ek-I’de listelenen kabul edilebilir seyreltme suyu ile uyumlu olan herhangi bir su test suyu olarak uygundur. Su test boyunca aynı kaliteyi korumalıdır. Yeniden oluşturulmuş su belirli miktarda deiyonize veya distile suya kabul edilen analitik derecede belirli miktarda reaktif katılarak yapılabilir. Yeniden oluşturulmuş su örnekleri (1)(6) ve Ek-II’de verilmektedir. Ek-II’de yer alan M4 ve M7 gibi şalet oluşturucuları içeren ortamların metal içeren test maddelerinden sakınılması gerekir. pH 6-9 aralığında olmalıdır. Daphnia magna için sertliğin 140-250 mg/l (CaCO3) aralığında olması tavsiye edilir, ancak diğer su piresi türleri için daha düşük sertlikte uygun olabilir. Seyreltme suyu çözünmüş oksijen konsantrasyonunun doygunluğa ulaşması amacıyla test için kullanılmadan önce havalandırılır.


Eğer doğal kullanılıyorsa, kalite parametreleri yılda en az iki defa veya parametrelerin önemli boyutta değiştiğinden şüphelenildiği durumlarda ölçülmelidir (bkz. önceki paragraf ve Ek-I). Ağır metal (örneğin Cu, Pb, Zn, Hg, Cd, Ni) ölçümleri de yapılmadır. Kloru giderilmiş musluk suyu kullanılırsa günlük klor analiz gerekebilir. Eğer seyreltme suyu yüzey ya da yer altı suyu ise iletkenlik ve toplam organik karbon (TOK) veya kimyasal oksijen ihtiyacı (KOİ) ölçülmelidir.


      1. Test çözeltileri

Seçilen konsantrasyonlardaki test çözeltileri genellikler stok çözeltinin seyreltilmesi ile hazırlanır. Stok çözelti tercihen test maddesinin seyreltme suyunda çözünmesiyle hazırlanır. Çözücülerin, emülgatörlerin veya dispersanların kullanılmasından mümkün oldukça kaçınılmalıdır. Bununla birlikte, bu bileşikler bazı durumlarda uygun konsantrasyondaki stok çözeltilerini hazırlamada gerekli olabilir. Uygun çözücüler, emülgatörler ve dispersanlar için rehber (4)’de verilmiştir. Test çözeltisindeki test maddesi seyreltme suyundaki çözünürlük limitlerini hiçbir zaman geçmemelidir.


Test, pH ayarlanması yapmadan yürütülür. Eğer pH 6-9 aralığında kalmıyorsa, ikinci bir test yapılır ve bu testte stok çözeltinin pH’ı, test maddesi eklenmeden önceki seyreltme suyunun pH’ına eşit hale getirilir. pH, stok çözelti konsantrasyonunu önemli bir şekilde değiştirmeyecek, kimyasal bir tepkimeye veya test maddesinin buharlaşmasına yol açmayacak bir şekilde ayarlanmalıdır. HCl ve NaOH tercih edilir.


    1. İşlem




      1. Maruz kalma koşulları




        1. Test grupları ve kontroller

Test tüpleri, uygun miktarda seyreltme suyu ve test maddesi çözeltileri ile doldurulur. Tüpteki hava/su hacim oranı test ve kontrol grubunda eşit olmalıdır. Sonra, su pireleri test tüplerine yerleştirilir. Her test konsantrasyonu ve kontrol grubu başına tercihen beş hayvanlık dört grup halinde en az 20 hayvan kullanılır. Her hayvan içim en az 2 ml test çözeltisi gereklidir (yani test tüpü başına 5 su piresi için 10 ml hacim). Test için yarı-statik yenilenme sistemi veya test maddesi kararlı değilse akışlı sistem kullanılabilir.


Uygulama serilerine ilaveten, seyreltme-su kontrol serisi için bir tane ve ayrıca, ilgili olduğu yerlerde, çözücü ajanı içeren kontrol serisi için de bir tane test yapılır.


        1. Test konsantrasyonları

Test maddesinin toksisitesi hakkında mevcut bilgi bulunmuyorsa, aralık-bulma testi yapılarak belirleyici test için konsantrasyon aralığı tespit edilir. Bu amaçla, test maddesinin çok çeşitli konsantrasyonlarına maruz bırakılırlar. Beş su piresi her test konsantrasyonunda en az 48 saat veya daha az maruz bırakılır; tekrar gerekli değildir. Aralık bulma testi için uygun veri daha az sürede elde edilebiliyorsa, maruz kalma süresi kısaltılabilir (örneğin 24 saat veya daha az).


En az beş test konsantrasyonu kullanılır. Bu konsantrasyonlar, tercihen 2,2’yi aşmayan katlarda bir geometrik seri ile düzenlenir. Beşten daha az sayıdaki konsantrasyon kullanılırsa, gerekçe gösterilmelidir. En yüksek test konsantrasyon ile %100 hareketsizlik; en düşük konsantrasyon ile gözlemlenen etki bulunmaması tercih edilir.


        1. İnkübasyon koşulları

Sıcaklık 18 oC ile 22 oC aralığında olmalı ve her bir test için ±1 oC aralığında sabit tutulmalıdır. 16 saat aydınlık, ardından 8 saat karanlık döngüsü tavsiye edilir. Özellikle test maddesinin ışıkta kararsız olduğu durumlarda, tam karanlık kabul edilir.




        1. Süre

Test süresi 48 saattir.




      1. Gözlemler

Her test tüpünde, testin başlangıcından itibaren 24. ve 48. saatlerde hareket etmeyen su pireleri olup olmadığı kontrol edilir (Tanımlar için 1.2’ye bkz.). Hareketsizliğe ilaveten, bütün anormal davranışlar veya görünüşler rapora yazılır.




      1. Analitik ölçüler

Testin başında ve sonunda kontrol grubunda (gruplarında) ve en yüksek test maddesi konsantrasyonunda Çözünmüş oksijen ve pH ölçülür. Kontrollerdeki çözünmüş oksijen konsantrasyonu geçerlilik ölçütlerini (Bölüm 1.6’ya bkz.) sağlamalıdır. pH herhangi bir testte 1,5 birimden daha fazla değişkenlik göstermemelidir. Sıcaklık, genelde kontrol tüplerinde veya ortam havasında ölçülür. Tercihen test süresi boyunca devamlı olarak ama en azından testin başlangıcı ve sonunda en az iki defa olmak üzere sıcaklık ölçülür ve kayıt tutulur.


Test maddesinin konsantrasyonu, en azından en yüksek ve en düşük test konsantrasyonlarında, testin başlangıcı ve sonunda ölçülmelidir (4). Sonuçların ölçülmüş konsantrasyonlara dayandırılması tavsiye edilir. Bununla beraber, test maddesi konsantrasyonunun test süresi boyunca nominalin veya başlangıçta ölçülen konsantrasyonun ±%20 aralığında korunduğu yeterli bir şekilde kanıtlanabilirse, bu durumda sonuçlar nominal değere veya ölçülmüş ilk değere dayandırılabilir.



    1. Sınır testi

Bu yöntemde açıklanan prosedürler kullanılarak, test maddesinin 100mg/l’lik konsantrasyonunda veya test ortamındaki azami çözünürlük sınırında (hangi konsantrasyon daha düşükse) bir sınır testi yapılabilir. Bunun amacı, EC50’nin ölçülen konsantrasyondan daha büyük olduğunu göstermektedir. Sınır testinde, (tercihen beşer su piresi içeren dört gruba ayrılmış)20 su piresi kullanılır. Kontrol(ler)de de 20 su piresi kullanılmalıdır. Hareketsizlik oluşursa, tam bir çalışma yürütülmelidir. Gözlemlenen bütün anormal davranışlar raporlanmalıdır.





  1. VERİ

Veri, tablo şeklinde özetlenir; her uygulama ve kontrol grubu için kullanılan su piresi sayısı ve her gözlemdeki hareketsizlik sayısı bu tabloda gösterilir. 24. ve 48. saatlerde ölçülen hareketsizlik yüzdesinin, test konsantrasyonlarına karşı grafiği çizilir. Eğrilerin eğimlerini ve %95 güven aralığında EC50’yi (p=0,05)hesaplamak için uygun istatistik yöntemleri (ör. Probit analizi, vs.) kullanılarak veri analizi edilir (7)(8).


EC50 hesaplarken kullanılan standart yöntemler elde edilen verilere uygulanamıyorsa EC50’ye yakın bir değer hesaplayabilmek için hareketsizliğe yol açmayan en yüksek konsantrasyon ve %100 hareketsizlikle sonuçlanan en düşük konsantrasyon kullanılır (bu iki konsantrasyonun geometrik ortalaması alınır).



  1. RAPORLAMA



    1. Test raporu

Test raporu aşağıdakileri içerir:


Test maddesi:

  • Fiziksel özellikleri ve ilgili fiziko-kimyasal özellikleri,

  • Saflık dâhil kimyasal kimlik verisi.

Test türleri:



  • Su piresi kaynağı ve türleri, (eğer biliniyorsa) kaynak tedarikçisi ve kullanılan kültür koşulları (besinin kaynağı, çeşidi ve miktarı, besleme sıklığı dahil).

Test koşulları:



  • Test tüplerinin tarifi: tüp tipleri, çözelti hacmi, tüp başına kullanılan su piresi sayısı, konsantrasyon başına kullanılan test tüpü (tekrarların) sayısı,

  • Stok ve test çözeltisi hazırlama yöntemleri, kullanılan her türlü çözücü veya dispersan ve konsantrasyonları,

  • Seyreltme detayı: kaynak ve su kalitesi özellikleri (pH, sertlik, Ca/Mg oranı, Na/K oranı, alkalite, iletkenlik, vs.); yeniden oluşturulmuş su kullanıldıysa bileşimi,

  • İnkübasyon koşulları: sıcaklık, ışık yoğunluğu ve sıklığı, çözünmüş oksijen, pH, vs.

Sonuçlar;



  • Kontrollerde ve her bir uygulama grubunda, her bir elde edilme zamanında hareketsiz olan veya olumsuz etkiler gözlenen (anormal davranışlar dahil) su pirelerinin sayıları ve oranları ve etki elde edilen ortamın tanımı,

  • Mümkünse, sonuçlar ve referans maddesi ile gerçekleştirilen testin tarihi,

  • Nominal test konsantrasyonları ve test kaplarındaki test maddesi konsantrasyonu tayini için gerçekleştirilen tüm analizlerin sonuçları; metodun geri dönüşüm verimliliği ve tayin sınırı da raporlanmalıdır,

  • Sıcaklık, pH ve çözünmüş oksijenin test süresince tüm fizikokimyasal ölçümleri,

  • Beslenen deneklerin güvenli aralıklarda 48 saat hareketsiz kaldıkları EC50 değeri ve hesaplama için kullanılan grafikler, doz-cevap eğrilerinin eğimleri ve bunların standart sapmaları; EC50 değerinin tayini için kullanılan istatistiki yöntemler; (bu veriler 24 saat hareketsiz kalım için de hesaplandıysa rapor edilmelidir),

  • Test yönteminden herhangi bir sapma ve bu sapmadan dolayı sonucun nasıl etkilendiği.



  1. KAYNAKLAR



  1. ISO 6341. (1996). Water quality — Determination of the inhibition of the mobility of Daphnia magna Straus (Cladocera, Crustacea) — Acute toxicity test. Third edition, 1996.

  2. EPA OPPTS 850.1010. (1996). Ecological Effects Test Guidelines — Aquatic Invertebrate Acute Toxicity Test, Freshwater Daphnids.

  3. Environment Canada. (1996) Biological test method. Acute Lethality Test Using Daphnia spp. EPS 1/RM/11. Environment Canada, Ottawa, Ontario, Canada.

  4. Guidance Document on Aquatic Toxicity Testing of Difficult Substances and Mixtures. OECD Environmental Health and Safety Publication. Series on Testing and Assessment. No 23. Paris 2000.

  5. Commission of the European Communities. Study D8369. (1979). Inter-laboratory Test Programme concerning the study of the ecotoxicity of a chemical substance with respect to Daphnia.

  6. OECD Guidelines for the Testing of Chemicals. Guideline 211: Daphnia magna Reproduction Test,adopted September 1998.

  7. Stephan C.E. (1977). Methods for calculating an LC50. In Aquatic Toxicology and Hazard Evaluation (edited by F.I. Mayer and J.L. Hamelink). ASTM STP 634 — American Society for Testing and Materials. p.65-84

  8. Finney D.J. (1978). Statistical Methods in Biological Assay. 3rd ed. London. Griffin, Weycombe, UK


Ek- I
KABUL EDİLEBİLİR SEYRELTME SUYUNUN BAZI KİMYASAL ÖZELLİKLERİ


Madde

Konsantrasyon

Partikül maddesi

< 20 mg/l

Toplam organik karbon

< 2 mg/l

İyonize olmamış amonyak

< 1 µg/l

Artık Klor

< 10 µg /l

Toplam organafosforik pestisit

< 50 ng/l

Toplam organoklorür pestisit ve poliklorlu bifeniller

< 50 ng/l

Toplam organik klor

< 25 ng/l


Ek- II
YENİDEN OLUŞTURULMUŞ TEST SUYU ÖRNEKLERİ
ISO Test Suyu (1)


Stok Çözelti (tek madde)

Yeniden oluşturulmuş suyun hazırlanması için, 1 L suya ilave edilecek stok çözelti hacimleri

Madde

1 L suya eklenen miktar (*)

Kalsiyum klorür

CaCl2, 2 H2O



11,76 g

25 ml

Magnezyum Sülfat

MgSO4, 7 H2O



4,93 g

25 ml

Sodyum Bikarbonat

NaHCO3



2,59 g

25 ml

Potasyum Klorür

KCl


0,23 g

25 ml

(*) Uygun saflığa sahip su, örn. deiyonize, distile,veya iletkenliği 10 µS.cm-1’den az olan ters ozmoza tabi tutulmuş

Elendt M7 ve M4 ortamı


Elendt M4 ve M7 ortamına aklimatizasyon
Bazı laboratuvarlar su pirelerini M4 ve M7 ortamında doğrudan transferinde sıkıntılar yaşamışlardır. Ancak aşamalı aklimatizasyon ile başarı sağlandığı gözlenmiştir, örn. kendi ortamından %30 Elendt ortamına, sonra %60 Elendt ve %100 Elendt ortamına. Aklimatizasyon için bir aylık bir süre gereklidir.
Hazırlık
Eser Elementler
İlk önce uygun saflıktaki suda (örn. deiyonize, distile veya ters osmoza tabi tutulmuş) Münferit Eser Elementlerin Stok Çözeltileri (I) ayrılmalıdır. Farklı olan bu Stok (I) çözeltisinden tüm eser elementleri içeren (birleşik çözelti) ikinci bir stok çözelti olan Stok (II) hazırlanmalıdır. örn.;


Stok (I) çözeltisi/çözeltileri (tek madde)

Suya eklenen miktar (mg/l)

Konsantrasyon (M4 ortamı ile ilgili)

Birleşik Stok Çözeltisi (II) nin hazırlanması için Stok (I) çözeltisinden suya eklenmesi gereken miktar (mg/l)

M4

M7

H3BO3

57 190

20000-kat

1,0

0,25

MnCl2.4H2O

7210

20000-kat

1,0

0,25

LiCl

6120

20000-kat

1,0

0,25

RbCl

1420

20000-kat

1,0

0,25

SrCl2.6H2O

3040

20000-kat

1,0

0,25

NaBr

320

20000-kat

1,0

0,25

Na2 MoO4.2H2O

1230

20000-kat

1,0

0,25

CuCl2.2H2O

335

20000-kat

1,0

0,25

ZnCl2

260

20000-kat

1,0

0,25

CoCl2.6H2O

200

20000-kat

1,0

0,25

KI

65

20000-kat

1,0

1,0

Na2 SeO3

43,8

20000-kat

1,0

1,0

NH4 VO3

11,5

20000-kat

1,0

1,0

Na2 EDTA.2H2O

5000

2000-kat

-

-

FeSO4.7H2O

1991

2000-kat

-

-

Na2EDTA ve FeSO4 çözeltilerinin her ikisi de ayrı ayrı, birleştirilir ve hemen otoklava konulur.

2 litre Fe-EDTA çözeltisi




1000-kat

20,0

5,0

M4 ve M7 ortamı



M4 ve M7 ortamı Stok (II) çözeltisi, makro gıdalar ve vitaminler kullanılarak aşağıdaki gibi hazırlanır:






Suya eklenen miktar (mg/l)

Konsantrasyon (M4 ortamı ile ilgili)

Ortamı hazırlamak için eklenmesi gereken Stok (II) Çözeltisi (mg/l)

M4

M7

Stok (II) Çözeltisi (birleşik eser elementler)




20 kat

50

50

CaCl2.2H2O

293800

1000-kat

1,0

1,0

MgSO4, 7 H2O

246600

2000-kat

0,5

0,5

KCl

58000

10000-kat

0,1

0,1

NaHCO3

64800

1000-kat

1,0

1,0

Na2SiO3 9 H2O

50000

5000-kat

0,2

0,2

NaNO3

2740

10000-kat

0,1

0,1

KH2PO4

1430

10000-kat

0,1

0,1

K2HPO4

1840

10000-kat

0,1

0,1

Birleşik Vitamin Stok

-

10000-kat

0,1

0,1

Birleşik Vitamin Stok’u aşağıda gösterildiği gibi 3 Vitamini 1 Litre suya ekleyerek oluşturulur.

Tiamin hidroklorür

750

10000-kat







Siyanokobalamin (B12)

10

10000-kat

Biotin

7,5

10000-kat

Birleşik Vitamin Stok’u küçük parçalar halinde donmuş olarak saklanır. Vitaminler kullanımdan kısa bir süre önce ortama eklenir.


Not: Tuz çökeleklerinin oluşumunu engellemek için, stok çözelti parçalarını yaklaşık 500-800 ml deiyonize suya ekleyin ve daha sonra 1 litreye tamamlayın.

Not: M4 ortamına ilişkin ilk yayın Elendt’de bulunabilir,B.p. (1990).Selenium deficiency in crustacea;an ultrastructural approach to antennal damage in Daphnia magna Straus.Protoplasma,154,25-33



Yüklə 5,29 Mb.

Dostları ilə paylaş:
1   ...   42   43   44   45   46   47   48   49   ...   81




Verilənlər bazası müəlliflik hüququ ilə müdafiə olunur ©muhaz.org 2024
rəhbərliyinə müraciət

gir | qeydiyyatdan keç
    Ana səhifə


yükləyin